Laboratoriumsmedizin
HA - Hämatologie
Analysen A-Z
AGLT (Pink-Test)
Material
EDTA-Blut: 5 ml
Methode
modifizierter Säure-Hämolyse-Test
Referenzbereich
Hämolyse ≤ 28,5
Quelle: Vettore, L. et al.: A new test for the laboratory diagnosis of spherocytosis. Acta haemat. 72: 258-263 (1984).
Indikation
Sphärozytose
Anmerkung
Siehe auch unter EMA-Test (Sphärozytose-Diagnostik) sowie Molekulargenetik / Analysen A-Z, Sphärozytose / Kugelzellanämie.
Blutbild, kleines
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung; ggf. Mikroskopie
Untersucht werden folgende Parameter:
Referenzbereich
Die Angaben zu den Referenzbereichen der einzelnen Parameter (siehe dort) stützen sich auf folgende Quellen:
- Nebe et al.: Multizentrische Ermittlung von Referenzbereichen für Parameter des maschinelllen Blutbildes. J Lab Med 2011; 35(1), 3-28.
- Sysmex Xtra 01/2010 Pädiatrische Referenzintervalle für das Analysensystem XE-2100, bezugnehmend auf Soldin S, Brugnara C, Wong E (eds.) (2007): Pediatric reference intervals. 6th ed. AACC Press, Washington, DC, 217-71.
Anmerkung
mögliche ergänzende Parameter:
- IPF (unreife Thrombozyten)
- Retikoluzyten
- Ret-He
Bitte bei Anforderung vermerken.
Akkreditiert
ja
Erythrozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung; ggf. Mikroskopie
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte |
---|---|
Männer über 18 Jahre | 4,5-5,8 x 106/µl |
Frauen über 18 Jahre | 4,0-5,2 x 106/µl |
Kinder | |
0-14 Tage | 4,1-5,7 x 106/µl |
15 Tage - 6 Monate | 2,9-4,8 x 106/µl |
6 Monate - 18 Jahre | 3,8-5,3 x 106/µl |
Akkreditiert
ja
Erythrozyten-Hb (MCH)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte in pg |
---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 26-33 |
Kinder | |
0-30 Tage | 30-36 |
1-2 Monate | 28-33 |
2 Monate - 18 Jahre | 23-30 |
Akkreditiert
ja
Erythrozyten-Konzentration, mittlere (MCHC)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte in g/dl Ery |
---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 32-37 |
Kinder | |
0-30 Tage | 33-36 |
1 Monat - 18 Jahre | 32-35 |
Akkreditiert
ja
Erythrozyten-Verteilungsbreite (RDW)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte in % |
---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 12-15 |
Kinder | |
0-14 Tage | 15-17 |
15-60 Tage | 14-17 |
2-24 Monate | 12-16 |
ab 2 Jahre | 12-15 |
Akkreditiert
ja
Erythrozyten-Volumen (MCV)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte in fl |
---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 80-96 |
Kinder | |
0-14 Tage | 91-106 |
15-30 Tage | 89-103 |
1-2 Monate | 83-96 |
2-6 Monate | 74-88 |
6 Monate - 12 Jahre | 70-88 |
12-18 Jahre | 77-91 |
Akkreditiert
ja
Hämatokrit
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte in Vol% |
---|---|
Männer über 18 Jahre | 40-51 |
Frauen über 18 Jahre | 35-45 |
Kinder | |
0-14 Tage | 40-57 |
15-30 Tage | 31-45 |
1-6 Monate | 27-38 |
6 Monate - 6 Jahre | 31-38 |
6-12 Jahre | 32-40 |
12-18 Jahre | 33-44 |
Akkreditiert
ja
Hämoglobin
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte in g/dl |
---|---|
Männer über 18 Jahre | 13,5-17,5 |
Frauen über 18 Jahre | 11,6-15,5 |
Kinder | |
0-14 Tage | 13,4-20,0 |
15-30 Tage | 10,0-15,3 |
1-2 Monate | 8,9-12,7 |
2 Monate - 6 Jahre | 9,6-12,7 |
6-12 Jahre | 10,6-13,4 |
12-18 Jahre | 10,8-14,5 |
Akkreditiert
ja
Leukozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung; ggf. Mikroskopie
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte /µl |
---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 3.920-10.410 |
Kinder | |
0-2 Monate | 7.050-15.400 |
2-24 Monate | 5.980-13.510 |
2-6 Jahre | 4.860-13.380 |
6-12 Jahre | 4.270-11.400 |
12-18 Jahre | 3.840-9.840 |
Akkreditiert
ja
Thrombozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung
Referenzbereich
Personengruppe | Normwerte /µl |
---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 146.000-391.000 |
Kinder | |
0-14 Tage | 144.000-449.000 |
15 Tage - 6 Monate | 229.000-597.000 |
6 Monate - 6 Jahre | 189.000-459.000 |
6 -18 Jahre | 175.000-369.000 |
Akkreditiert
ja
Blutgruppe (ABO, Rh und Untergruppen)
Material
Vollblut/EDTA-Blut: 5-10 ml
Methode
Agglutination
Indikation
Mutterschaftsvorsorge, OP- und Transfusions-Vorbereitung
Anmerkung
Blutgruppe (komplett)
Umfasst die Bestimmung der AB0-Eigenschaften, des Rh-Faktors, der Rhesusuntergruppen (C,c,E,e), des Merkmals Kell (K) sowie den Antikörpersuchtest.
Blutgruppe (klein)
Umfasst die Bestimmung der AB0-Eigenschaften, des Rh-Faktors und den Antikörpersuchtest.
Hinweis:
Beschriftung der Probe mit Name, Vorname, Geburtsdatum
Für blutgruppenserologische Untersuchungen ist eine nur für diesen Zweck bestimmte Blutprobe erforderlich!
Akkreditiert
ja
Blutsenkungsgeschwindigkeit (BSG)
Material
Citrat-Blut: 3,5 ml, spezielles BSG-Röhrchen (ggf. bitte anfordern)
kein Postversand
Methode
Blutsenkung nach 1 Stunde nach Westergren
Referenzbereich
Weiblich
≤ 50 Jahre: ≤ 20 mm
> 50 Jahre: ≤ 30 mm
Männlich
≤ 50 Jahre: ≤15 mm
> 50 Jahre: ≤ 20 mm
Coombs-Test
Coombs-Test, direkt
Material
EDTA-Blut: 2 ml
Methode
Agglutination
Referenzbereich
negativ
Akkreditiert
ja
Coombs-Test, indirekt
Material
Vollblut, EDTA-Blut: 5-10 ml
Methode
Agglutination
Referenzbereich
negativ
Anmerkung
falls möglich abzentrifugieren und getrennt einsenden
Akkreditiert
ja
Differenzial-Blutbild
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
maschinelle Zellzählung; ggf. Mikroskopie
Untersucht werden:
Referenzbereich
Die Angaben zu den Referenzbereichen der einzelnen Parameter (siehe dort) stützen sich auf folgende Quellen:
- Nebe et al.: Multizentrische Ermittlung von Referenzbereichen für Parameter des maschinelllen Blutbildes. J Lab Med 2011; 35(1), 3-28.
- Sysmex Xtra 01/2010 Pädiatrische Referenzintervalle für das Analysensystem XE-2100, bezugnehmend auf Soldin S, Brugnara C, Wong E (eds.) (2007): Pediatric reference intervals. 6th ed. AACC Press, Washington, DC, 217-71.
- Pekelharing et al.: Heametalogy reference intervals for established and novel parameters in healthy adults. Sysmex Diagnostic Perspectives 2010; 1, 01-11.
Akkreditiert
ja
Basophile Granulozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Impedanzmessung, ggf. Mikroskopie
Referenzbereich
relativ % | absolut /µl |
---|---|
0-1 | < 110 |
Akkreditiert
ja
Eosinophile Granulozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Impedanzmessung, ggf. Mikroskopie
Referenzbereich
relativ % | absolut /µl |
---|---|
0-8 | < 850 |
Akkreditiert
ja
Lymphozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Impedanzmessung, ggf. Mikroskopie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 18-48 | 1.050-3.560 |
Kinder | ||
0-14 Tage | 25-69 | 1.750-8.000 |
15-30 Tage | 32-83 | 2.110-8.380 |
1-2 Monate | 38-87 | 2.290-9.140 |
2-6 Monate | 30-86 | 2.140-8.990 |
6-24 Monate | 26-80 | 1.520-8.090 |
2-6 Jahre | 18-69 | 1.130-5.770 |
6-18 Jahre | 16-58 | 970-4.280 |
Akkreditiert
ja
Monozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Impedanzmessung, ggf. Mikroskopie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 4-15 | 250-870 |
Kinder | ||
0-14 Tage | 5-21 | 520-1.770 |
15-30 Tage | 4-18 | 280-1.380 |
1-2 Monate | 4-16 | 280-1.210 |
2-24 Monate | 4-13 | 240-1.170 |
2-18 Jahre | 4-12 | 180-950 |
Akkreditiert
ja
Neutrophile Granulozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Impedanzmessung, ggf. Mikroskopie
Referenzbereich
Personengruppe | Segmentkernige rel.% | Segmentkernige abs. /µl |
---|---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 41-74 | 1.780-7.340 |
Kinder | ||
0-14 Tage | 15-66 | 1.600-6.750 |
15-30 Tage | 11-57 | 1.180-5.450 |
1-2 Monate | 9-68 | 830-4.680 |
2-6 Monate | 11-76 | 970-7.200 |
6-24 Monate | 17-74 | 1.190-7.210 |
2-6 Jahre | 22-69 | 1.540-8.290 |
6-18 Jahre | 29-75 | 1.540-7.870 |
Akkreditiert
ja
EMA-Test (Sphärozytose-Diagnostik)
Material
EDTA-Blut: 3 ml, Probeneingang Montag-Donnerstag bis 14:00 Uhr. Aufgrund geringer Probenstabilität sollte das Material bei Probeneingang nicht älter als 24 h sein.
Methode
Durchflusszytometrie (EMA)
Referenzbereich
EMA-Test: > 400 MFI
(in Kombination mit Pink-Test (AGLT): ≤ 28,5% Hämolyse)
Indikation
Abklärung der hereditären Sphärozytose
Anmerkung
Akkreditiert
ja
Erythrozyten-Autoantikörper
Kälte-Autoantikörper
Material
Entnahme idealerweise vor Ort im MVZ-Labor montags bis donnerstags
oder ggf. Erythozyten und Serum/Plasma (2 ml) bei 37°C abtrennen und einsenden.
Methode
Agglutination
Referenzbereich
1:64
Wärme-Autoantikörper
Material
EDTA-Blut: 3 ml und Vollblut: 10 ml
Methode
Agglutination
Referenzbereich
negativ
FMH-Test (Fetomaternale Transfusion)
Material
EDTA-Blut: 1 ml
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
HbF+CA- (Kindliche HbF-Zellen)
keine FMH: < 0,02%
fetale Mikrotransfusion: ≥ 0,02-0,6%
fetale Makrotransfusion: ≥ 0,6%
(Bewertung siehe Befundbericht)
Quellen:
Thomas, L.: Labor und Diagnose 2020. https://www.labor-und-diagnose-2020.de/index.html; abgerufen am 27.01.2022
Kiefel, V. (2010). Transfusionsmedizin und Immunhämatologie (4. Auflage). Springer-Verlag.
Sebring, E. S., Polesky, H. F.: Fetomaternal hemorrhage: incidence, risk factors, time of occurence, and clinical effects. Transfusion 1990; 30; 344-357.
Indikation
- Nachweis und quantitative Verlaufskontrolle einer FMH
- Kontrolle von blutigem Fruchtwasser nach Amniozentese
- Bestätigung von Nabelschnurpunktionen
Akkreditiert
ja
Hämoglobin A2
Material
EDTA-Blut: 2 ml
Methode
Kapillar-Elektrophorese
Anmerkung
Akkreditiert
ja
Hämoglobin-Elektrophorese
Material
EDTA-Blut: 2 ml
Probe bei 2-8°C lagern (nicht länger als 7 Tage)
Methode
Kapillar-Elektrophorese und Blutbild
Referenzbereich
Für Kinder > 12 Monate und Erwachsene:
HbA: > 96%
HbA2: 2.2-3.0%
HbF:< 1.1%
Atypische Hämoglobine: negativ
Bei Säuglingen erfolgt eine individuelle Beurteilung unter Angabe der altersspezifischen HbF-Werte.
Quellen:
- Kompendium der Hämoglobinopathien, Elisabeth Kohne, Sebia Education Library 2012
- Haemoglobinopathy Diagnosis, Barbara J. Bain, Blackwell Publishing, second edition, revised 2006/2008; S. 3, 12-14
- Identification and quantification of hemoglobins in whole blood: the analytical and organizational aspects of Capillarys 2 Flex Piercing compared with agarose electrophoresis and HPLC methods, Sara Altinier et al., Clin Chem Lab Med 2012
- Variabilità delle frazioni emoglobiniche dalla nascita all età adulta in condizioni fisiologiche e patologiche, Giovanni Ivaldi et al., biochimica clinica, 2007, vol. 31, n. 4
Indikation
Hypochrome, mikrozytäre Anämie
ACHTUNG: Ein unauffälliger Befund der Hämoglobin-Elektrophorese schließt das Vorliegen einer Alpha-Thalassämie nicht aus. Die Abklärung einer Alpha-Thalassämie kann nur über die molekulargenetische Analytik erfolgen.
Anmerkung
Stufendiagnostik Thalassämie / Hämoglobinopathie
1. Hämoglobin-Elektrophorese, bei auffälligem Befund
2. Molekulargenetische Analytik des jeweiligen Globin-Gens mittels PCR (Detektionsanalyse), Sequenzierung und MLPA siehe dort Hämoglobinopathien.
Für die Anforderung der Stufendiagnostik nutzen Sie bitte unseren speziellen Anforderungsschein Thalassämie / Hämoglobinopathie.
Akkreditiert
ja
Hämoglobin, fetales (HbF)
Material
EDTA-Blut: 2 ml
Methode
Kapillar-Elektrophorese
Anmerkung
siehe Hämoglobin-Elektrophorese oder FMH-Test
Akkreditiert
ja
Hämoglobin, frei (Plasma-Hämoglobin)
Hämoglobin, frei im Plasma
Material
Heparin-oder EDTA-Plasma: 2 ml
Methode
spektralphotometrisch nach Harboe
Referenzbereich
< 3 mg/dl
Hämoglobin, frei im Serum
Material
Serum: 2 ml
Methode
spektralphotometrisch nach Harboe
Referenzbereich
< 20 mg/dl
Akkreditiert
ja
IPF (unreife Thrombozyten)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Fluoreszenz
Referenzbereich
0,8-6,3% der Gesamt-Thrombozyten
Quelle: Pekelharing et al.: Heametalogy reference intervals for established and novel parameters in healthy adults. Sysmex Diagnostic Perspectives 2010; 1, 01-11.
Indikation
Differentialdiagnose und Monitoring der Thrombozytopenie,
Monitoring der Thrombopoese nach Knochenmarksversagen
Akkreditiert
ja
Kryoglobuline
Material
Idealerweise wird die Probenentnahme im Labor in Dortmund durchgeführt.
Ansonsten: Vollblut 10 ml sofort bei 37°C gerinnen lassen, warm zentrifugieren und Serum versenden!
Methode
Präzipitation
Referenzbereich
negative
Leukämie- und Lymphom-Typisierung
Material
EDTA-Proben: mind. 3 ml (frisch)
BAL, Pleurapunktat,
Liquor (frisch)
Methode
Durchflusszytometrie
Eine Gesamtübersicht zur Diagnostik hämato-onkologischer Systemerkrankungen einschließlich Zytogenetik, FISH-Analytik und Molekulargenetik siehe Kapitel Onkologie/Hämato-onkologische Systemerkrankungen.
Anmerkung
Spezielle Antikörperkombinationen sind auf Wunsch nach Rücksprache möglich.
Tel.: 0231 · 9572-180 oder E-Mail: haema@labmed.de
Akkreditiert
ja
Kontakt Analysebereich
E-Mail: teller@labmed.de
Leukozyten-Phosphatase, alk.
Material
4 luftgetrocknete Ausstriche aus Nativblut, 30 Sek. fixiert im Gemisch (9 Teile Methanol/1 Teil 37%iges Formalin)
Methode
nach Heilmeyer
Referenzbereich
Index 20-100
Lymphozyten-Differenzierung / Immunstatus, zellulär
Material
EDTA-Proben: mind. 3 ml (frisch)
BAL, Pleurapunktat,
Liquor (frisch)
Methode
Durchflusszytometrie
Untersucht werden folgende Parameter:
- B-Lymphozyten (CD19+)
- Natürliche Killer-T-Zellen (CD3+CD56+)
- Natürliche Killerzellen (CD16+/CD56+)
- T-Helferzellen (CD3+CD4+)
- T-Lymphozyten gesamt (CD3+)
- T-Suppressor- / Zytotoxische T-Zellen (CD3+CD8+)
- T4/T8-Ratio (CD4/CD8-Quotient
Weitere CD-Differenzierung je nach Fragestellung (z.B. PNH oder Leukämie) möglich.
Referenzbereich
Die Angaben zu den Referenzbereichen der einzelnen Parameter (siehe dort) stützen sich auf folgende Quellen:
- Sysmex Xtra 01/2010 „Pädiatrische Referenzintervalle für das Analysensystem XE-2100“ bezugnehmned auf Soldin S, Brugnara C, Wong E (eds.) (2007): Pediatirc reference intervals. 6th ed. AACC Press, Washington, DC, 217-71
- Pekelharing et al.: “heametalogy reference intervals for established and novel parameters in healthy adults”. Sysmex Diagnostic Perspectives 2010; 1, 01-11
- Nebe et al.: “Multizentrische Ermittlung von Referenzbereichen für Parameter des maschinelllen Blutbildes”. J Lab Med 2011; 35(1), 3-28
- Comans-Bitter et al.: “Immunophenotyping of blood lymphocytes in childhood“. J Pediatr 1997; 130; 3; 388-393
- Schatorjé et al.: “Paedriatic reference values for the peripheral T cell compartment”. Scand J Immunol 2012; 75; 436-444
- BD Multitest CD3/CD16+CD56/CD45/CD19 (2016) und CD3/CD8/CD45/CD4 (2017) Technical Data Sheets
- Fuchs, R., Staib, P., Brümmendorf, T. Manual Hämatologie, 28. Aufl. 2018, 155f
Akkreditiert
ja
B-Lymphozyten (CD19+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 5-22 | 80-616 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 5-22 | 400-1.100 |
1 Woche bis 2 Monate | 4-26 | 600-1.900 |
2-5 Monate | 14-39 | 600-3.000 |
5-9 Monate | 13-35 | 700-2.500 |
9-15 Monate | 15-39 | 600-2.700 |
15-24 Monate | 17-41 | 600-3.100 |
2-5 Jahre | 14-44 | 200-2.100 |
5-10 Jahre | 10-31 | 200-1.600 |
10-16 Jahre | 8-24 | 200-600 |
Akkreditiert
ja
Natürliche Killer-T-Zellen (CD3+CD56+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 1-18 | 23-410 |
Kinder | ||
< 1 Woche | < 3 | 6-210 |
1 Woche bis 2 Monate | < 1 | 7-91 |
2-5 Monate | < 1 | 13-90 |
5-9 Monate | < 4 | 4-510 |
9-15 Monate | < 4 | 8-330 |
15-24 Monate | < 6 | 7-230 |
2-5 Jahre | < 7 | 15-250 |
5-10 Jahre | < 14 | 12-340 |
10-16 Jahre | 1-15 | 16-350 |
Akkreditiert
ja
Natürliche Killerzellen (CD16+/CD56+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 5-26 | 84-724 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 6-58 | 100-1.900 |
1 Woche bis 2 Monate | 3-23 | 200-1.400 |
2-5 Monate | 2-14 | 100-1.300 |
5-9 Monate | 2-13 | 100-1.000 |
9-15 Monate | 3-17 | 200-1.200 |
15-24 Monate | 3-16 | 100-1.400 |
2-5 Jahre | 4-23 | 100-1.000 |
5-10 Jahre | 4-26 | 90-900 |
10-16 Jahre | 6-27 | 70-1.200 |
Akkreditiert
ja
T-Helferzellen (CD3+CD4+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 33-58 | 404-1.612 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 17-52 | 400-3.500 |
1 Woche bis 2 Monate | 41-68 | 1.700-5300 |
2-5 Monate | 33-58 | 1.500-5.000 |
5-9 Monate | 33-58 | 1.400-5.100 |
9-15 Monate | 31-54 | 1.000-4.600 |
15-24 Monate | 25-50 | 900-5.500 |
2-5 Jahre | 23-48 | 500-2.400 |
5-10 Jahre | 27-53 | 300-2.000 |
10-16 Jahre | 25-48 | 400-2.100 |
Akkreditiert
ja
T-Lymphozyten gesamt (CD3+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 56-86 | 754-2.764 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 28-76 | 600-5.000 |
1 Woche bis 2 Monate | 60-85 | 2.300-7.000 |
2-5 Monate | 48-75 | 2.300-6.500 |
5-9 Monate | 50-77 | 2.400-6.900 |
9-15 Monate | 54-76 | 1.600-6.700 |
15-24 Monate | 39-73 | 1.400-8.000 |
2-5 Jahre | 43-76 | 900-4.500 |
5-10 Jahre | 55-78 | 700-4.200 |
10-16 Jahre | 52-78 | 800-3.500 |
Akkreditiert
ja
T-Suppressor- / Zytotoxische T-Zellen (CD3+CD8+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 13-39 | 220-1.129 |
Kinder | ||
< 1Woche | 10-41 | 200-1.900 |
1 Woche bis 2 Monate | 9-23 | 400-1.700 |
2-5 Monate | 11-25 | 500-1.600 |
5-9 Monate | 13-26 | 600-2.200 |
9-15 Monate | 12-28 | 400-2.100 |
15-24 Monate | 11-32 | 400-2.300 |
2-5 Jahre | 14-33 | 300-1.600 |
5-10 Jahre | 19-34 | 300-1.800 |
10-16 Jahre | 9-35 | 200-1.200 |
Akkreditiert
ja
T4/T8-Ratio (CD4/CD8-Quotient)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | Quotient |
---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 1,0-3,0 |
Kinder | |
< 1 Woche | 1,0-2,6 |
1 Woche bis 2 Monate | 1,3-6,3 |
2-5 Monate | 1,7-3,9 |
5-9 Monate | 1,6-3,8 |
9-15 Monate | 1,3-3,9 |
15-24 Monate | 0,9-3,7 |
2-5 Jahre | 0,9-2,9 |
5-10 Jahre | 0,9-2,6 |
10-16 Jahre | 0,9-3.4 |
Akkreditiert
ja
Philadelphia-Chromosom
Gensymbole
BCR-ABL
Anmerkung
Molekulargenetische Diagnostik siehe
BCR-ABL, qualitativ,
BCR-ABL, quantitativ,
BCR-ABL, Mutationsanalyse.
Ansprechpartner Molekulargenetik:
Dr. rer. nat. Thomas Haverkamp, Tel.: 0231 · 9572 - 6617
Zytogenetische Diagnostik siehe Klassische Chromosomenanalyse der CML
FISH-Analysen bei ALL, CML, MPN.
Ansprechpartner Zytogenetik:
Klassische Chromosomenanalyse: Dr. rer. nat. Bettina Staats, Tel.: 0231 · 9572 - 6514
FISH-Analysen: Dr. rer. nat. Daniela Ehling, Tel.: 0231 · 9572 - 6555
Akkreditiert
ja
PNH-Diagnostik (CD14, CD48, CD24, CD66B, CD55, CD59)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
> 97% Expression der GPI-verankerten Moleküle auf der Oberfläche der jeweiligen Zelltypen
Indikation
Paroxysmale nächtliche Hämoglobulinurie
Akkreditiert
ja
Ret-He (reticulocyte hemoglobine equivalent)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
28Hb/Reticulozyt
Indikation
- unklare normochrome (bzw. beginnende hypochrome) Anämien zur Abgrenzung eines echten von einem FEM, funktionellen Eisenmangel (gestörte Eisenbereitstellung)
- Monitoring von Erythropoietin- und/oder Eisentherapie insbesondere
bei der renalen Anämie, ggf. in Kombination mit Ferritin
und löslichem Transferrinrezeptor
Akkreditiert
ja
Retikulozyten
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Die Angaben zu den Referenzbereichen der einzelnen Parameter (siehe dort) stützen sich auf folgende Quellen:
- Sysmex Xtra 01/2010 Pädiatrische Referenzintervalle für das Analysensystem XE-2100, bezugnehmend auf Soldin S, Brugnara C, Wong E (eds.) (2007): Pediatric reference intervals. 6th ed. AACC Press, Washington, DC, 217-71.
-
Pekelharing et al.: Heametalogy reference intervals for established and novel parameters in healthy adults. Sysmex Diagnostic Perspectives 2010; 1, 01-11.
Personengruppe | Normwerte in % |
---|---|
Erwachsene über 18 Jahre | 0,4-1,4 |
Kinder | |
1-3 Tage | 3,5-5,4 |
4-30 Tage | 1,1-2,4 |
1-2 Monate | 2,1-3,5 |
2-6 Monate | 1,6-2,7 |
6-24 Monate | 1,0-1,8 |
2-6 Jahre | 0,8-1,5 |
6-12 Jahre | 1,0-1,9 |
12-18 Jahre | 0,9-1,5 |
Akkreditiert
ja
Zytokine
Anmerkung
Siehe Kapitel Klinische Chemie:
Interferon gamma
Interleukin 1
Interleukin 2
Interleukin 4
Interleukin 6
Interleukin 8
Interleukin 10
Tumor-Nekrose-Faktor (Alpha-), TNF
Immunphänotypisierung
EMA-Test (Sphärozytose-Diagnostik)
Material
EDTA-Blut: 3 ml, Probeneingang Montag-Donnerstag bis 14:00 Uhr. Aufgrund geringer Probenstabilität sollte das Material bei Probeneingang nicht älter als 24 h sein.
Methode
Durchflusszytometrie (EMA)
Referenzbereich
EMA-Test: > 400 MFI
(in Kombination mit Pink-Test (AGLT): ≤ 28,5% Hämolyse)
Indikation
Abklärung der hereditären Sphärozytose
Anmerkung
Akkreditiert
ja
FMH-Test (Fetomaternale Transfusion)
Material
EDTA-Blut: 1 ml
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
HbF+CA- (Kindliche HbF-Zellen)
keine FMH: < 0,02%
fetale Mikrotransfusion: ≥ 0,02-0,6%
fetale Makrotransfusion: ≥ 0,6%
(Bewertung siehe Befundbericht)
Quellen:
Thomas, L.: Labor und Diagnose 2020. https://www.labor-und-diagnose-2020.de/index.html; abgerufen am 27.01.2022
Kiefel, V. (2010). Transfusionsmedizin und Immunhämatologie (4. Auflage). Springer-Verlag.
Sebring, E. S., Polesky, H. F.: Fetomaternal hemorrhage: incidence, risk factors, time of occurence, and clinical effects. Transfusion 1990; 30; 344-357.
Indikation
- Nachweis und quantitative Verlaufskontrolle einer FMH
- Kontrolle von blutigem Fruchtwasser nach Amniozentese
- Bestätigung von Nabelschnurpunktionen
Akkreditiert
ja
Leukämie- und Lymphom-Typisierung
Material
EDTA-Proben: mind. 3 ml (frisch)
BAL, Pleurapunktat,
Liquor (frisch)
Methode
Durchflusszytometrie
Eine Gesamtübersicht zur Diagnostik hämato-onkologischer Systemerkrankungen einschließlich Zytogenetik, FISH-Analytik und Molekulargenetik siehe Kapitel Onkologie/Hämato-onkologische Systemerkrankungen.
Anmerkung
Spezielle Antikörperkombinationen sind auf Wunsch nach Rücksprache möglich.
Tel.: 0231 · 9572-180 oder E-Mail: haema@labmed.de
Akkreditiert
ja
Kontakt Analysebereich
E-Mail: teller@labmed.de
Lymphozyten-Differenzierung / Immunstatus, zellulär
Material
EDTA-Proben: mind. 3 ml (frisch)
BAL, Pleurapunktat,
Liquor (frisch)
Methode
Durchflusszytometrie
Untersucht werden folgende Parameter:
- B-Lymphozyten (CD19+)
- Natürliche Killer-T-Zellen (CD3+CD56+)
- Natürliche Killerzellen (CD16+/CD56+)
- T-Helferzellen (CD3+CD4+)
- T-Lymphozyten gesamt (CD3+)
- T-Suppressor- / Zytotoxische T-Zellen (CD3+CD8+)
- T4/T8-Ratio (CD4/CD8-Quotient
Weitere CD-Differenzierung je nach Fragestellung (z.B. PNH oder Leukämie) möglich.
Referenzbereich
Die Angaben zu den Referenzbereichen der einzelnen Parameter (siehe dort) stützen sich auf folgende Quellen:
- Sysmex Xtra 01/2010 „Pädiatrische Referenzintervalle für das Analysensystem XE-2100“ bezugnehmned auf Soldin S, Brugnara C, Wong E (eds.) (2007): Pediatirc reference intervals. 6th ed. AACC Press, Washington, DC, 217-71
- Pekelharing et al.: “heametalogy reference intervals for established and novel parameters in healthy adults”. Sysmex Diagnostic Perspectives 2010; 1, 01-11
- Nebe et al.: “Multizentrische Ermittlung von Referenzbereichen für Parameter des maschinelllen Blutbildes”. J Lab Med 2011; 35(1), 3-28
- Comans-Bitter et al.: “Immunophenotyping of blood lymphocytes in childhood“. J Pediatr 1997; 130; 3; 388-393
- Schatorjé et al.: “Paedriatic reference values for the peripheral T cell compartment”. Scand J Immunol 2012; 75; 436-444
- BD Multitest CD3/CD16+CD56/CD45/CD19 (2016) und CD3/CD8/CD45/CD4 (2017) Technical Data Sheets
- Fuchs, R., Staib, P., Brümmendorf, T. Manual Hämatologie, 28. Aufl. 2018, 155f
Akkreditiert
ja
B-Lymphozyten (CD19+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 5-22 | 80-616 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 5-22 | 400-1.100 |
1 Woche bis 2 Monate | 4-26 | 600-1.900 |
2-5 Monate | 14-39 | 600-3.000 |
5-9 Monate | 13-35 | 700-2.500 |
9-15 Monate | 15-39 | 600-2.700 |
15-24 Monate | 17-41 | 600-3.100 |
2-5 Jahre | 14-44 | 200-2.100 |
5-10 Jahre | 10-31 | 200-1.600 |
10-16 Jahre | 8-24 | 200-600 |
Akkreditiert
ja
Natürliche Killer-T-Zellen (CD3+CD56+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 1-18 | 23-410 |
Kinder | ||
< 1 Woche | < 3 | 6-210 |
1 Woche bis 2 Monate | < 1 | 7-91 |
2-5 Monate | < 1 | 13-90 |
5-9 Monate | < 4 | 4-510 |
9-15 Monate | < 4 | 8-330 |
15-24 Monate | < 6 | 7-230 |
2-5 Jahre | < 7 | 15-250 |
5-10 Jahre | < 14 | 12-340 |
10-16 Jahre | 1-15 | 16-350 |
Akkreditiert
ja
Natürliche Killerzellen (CD16+/CD56+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 5-26 | 84-724 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 6-58 | 100-1.900 |
1 Woche bis 2 Monate | 3-23 | 200-1.400 |
2-5 Monate | 2-14 | 100-1.300 |
5-9 Monate | 2-13 | 100-1.000 |
9-15 Monate | 3-17 | 200-1.200 |
15-24 Monate | 3-16 | 100-1.400 |
2-5 Jahre | 4-23 | 100-1.000 |
5-10 Jahre | 4-26 | 90-900 |
10-16 Jahre | 6-27 | 70-1.200 |
Akkreditiert
ja
T-Helferzellen (CD3+CD4+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 33-58 | 404-1.612 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 17-52 | 400-3.500 |
1 Woche bis 2 Monate | 41-68 | 1.700-5300 |
2-5 Monate | 33-58 | 1.500-5.000 |
5-9 Monate | 33-58 | 1.400-5.100 |
9-15 Monate | 31-54 | 1.000-4.600 |
15-24 Monate | 25-50 | 900-5.500 |
2-5 Jahre | 23-48 | 500-2.400 |
5-10 Jahre | 27-53 | 300-2.000 |
10-16 Jahre | 25-48 | 400-2.100 |
Akkreditiert
ja
T-Lymphozyten gesamt (CD3+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 56-86 | 754-2.764 |
Kinder | ||
< 1 Woche | 28-76 | 600-5.000 |
1 Woche bis 2 Monate | 60-85 | 2.300-7.000 |
2-5 Monate | 48-75 | 2.300-6.500 |
5-9 Monate | 50-77 | 2.400-6.900 |
9-15 Monate | 54-76 | 1.600-6.700 |
15-24 Monate | 39-73 | 1.400-8.000 |
2-5 Jahre | 43-76 | 900-4.500 |
5-10 Jahre | 55-78 | 700-4.200 |
10-16 Jahre | 52-78 | 800-3.500 |
Akkreditiert
ja
T-Suppressor- / Zytotoxische T-Zellen (CD3+CD8+)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | relativ % | absolut /µl |
---|---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 13-39 | 220-1.129 |
Kinder | ||
< 1Woche | 10-41 | 200-1.900 |
1 Woche bis 2 Monate | 9-23 | 400-1.700 |
2-5 Monate | 11-25 | 500-1.600 |
5-9 Monate | 13-26 | 600-2.200 |
9-15 Monate | 12-28 | 400-2.100 |
15-24 Monate | 11-32 | 400-2.300 |
2-5 Jahre | 14-33 | 300-1.600 |
5-10 Jahre | 19-34 | 300-1.800 |
10-16 Jahre | 9-35 | 200-1.200 |
Akkreditiert
ja
T4/T8-Ratio (CD4/CD8-Quotient)
Material
frisches EDTA-Blut: mind. 3 ml,
ggf. auch Heparin-Blut
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
Personengruppe | Quotient |
---|---|
Erwachsene (Personen > 16 Jahre) | 1,0-3,0 |
Kinder | |
< 1 Woche | 1,0-2,6 |
1 Woche bis 2 Monate | 1,3-6,3 |
2-5 Monate | 1,7-3,9 |
5-9 Monate | 1,6-3,8 |
9-15 Monate | 1,3-3,9 |
15-24 Monate | 0,9-3,7 |
2-5 Jahre | 0,9-2,9 |
5-10 Jahre | 0,9-2,6 |
10-16 Jahre | 0,9-3.4 |
Akkreditiert
ja
PNH-Diagnostik (CD14, CD48, CD24, CD66B, CD55, CD59)
Material
EDTA-Blut: 3 ml
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
> 97% Expression der GPI-verankerten Moleküle auf der Oberfläche der jeweiligen Zelltypen
Indikation
Paroxysmale nächtliche Hämoglobulinurie
Akkreditiert
ja
Zyto-Morphologie
Hämatologische Zytologie
Material
- Knochenmark-Präparate (bevorzugt 4-6 Ausstriche)
- Knochenmark-Aspirate (EDTA)
- Blutausstriche / EDTA-Blut
- Punktate
- Bronchiallavage (Probeneingang bis Freitag 14 Uhr)
- Liquor (Probe nicht älter als 2h)
Methode
- Färbung nach Pappenheim
- Eisenfärbung (Berliner-Blau-Reaktion)
Indikation
Bei hämato-onkologischen Fragestellungen bietet die Zytologie eine optimale Ergänzung zur Immunphänotypisierung, klassischen und FISH-Zytogenetik sowie Molekulargenetik. Die morphologische Beurteilung erlaubt die Beschreibung und Differenzierung der malignen und der gesunden Zellen.
Anmerkung
Bei Bedarf kann die zytologische Beurteilung auch als Einzelleistung angefordert werden.
Kontakt Analysebereich
E-Mail: arndt@labmed.de
Immunhämatologie
Blutgruppe (ABO, Rh und Untergruppen)
Material
Vollblut/EDTA-Blut: 5-10 ml
Methode
Agglutination
Indikation
Mutterschaftsvorsorge, OP- und Transfusions-Vorbereitung
Anmerkung
Blutgruppe (komplett)
Umfasst die Bestimmung der AB0-Eigenschaften, des Rh-Faktors, der Rhesusuntergruppen (C,c,E,e), des Merkmals Kell (K) sowie den Antikörpersuchtest.
Blutgruppe (klein)
Umfasst die Bestimmung der AB0-Eigenschaften, des Rh-Faktors und den Antikörpersuchtest.
Hinweis:
Beschriftung der Probe mit Name, Vorname, Geburtsdatum
Für blutgruppenserologische Untersuchungen ist eine nur für diesen Zweck bestimmte Blutprobe erforderlich!
Akkreditiert
ja
Coombs-Test, direkt
Material
EDTA-Blut: 2 ml
Methode
Agglutination
Referenzbereich
negativ
Akkreditiert
ja
Coombs-Test, indirekt
Material
Vollblut, EDTA-Blut: 5-10 ml
Methode
Agglutination
Referenzbereich
negativ
Anmerkung
falls möglich abzentrifugieren und getrennt einsenden
Akkreditiert
ja
Erythrozyten-Autoantikörper
Kälte-Autoantikörper
Material
Entnahme idealerweise vor Ort im MVZ-Labor montags bis donnerstags
oder ggf. Erythozyten und Serum/Plasma (2 ml) bei 37°C abtrennen und einsenden.
Methode
Agglutination
Referenzbereich
1:64
Wärme-Autoantikörper
Material
EDTA-Blut: 3 ml und Vollblut: 10 ml
Methode
Agglutination
Referenzbereich
negativ
Kryoglobuline
Material
Idealerweise wird die Probenentnahme im Labor in Dortmund durchgeführt.
Ansonsten: Vollblut 10 ml sofort bei 37°C gerinnen lassen, warm zentrifugieren und Serum versenden!
Methode
Präzipitation
Referenzbereich
negative
Mutterschaftsvorsorge
Alpha-1-Fetoprotein (AFP) im Fruchtwasser
Material
Fruchtwasser: 1 ml
Stabilität: 1 Tag bei 2-8°C, danach tieffrieren
Methode
CLIA
Referenzbereich
Vollendete Schwangerschaftswochen (SSW, 2,5-97,5 Perzentile):
14. SSW: 11065-20042 IU/ml (Median 16706)
15. SSW: 8414-24920 IU/ml (Median 17083)
16. SSW: 8603-26050 IU/ml (Median 14679)
17. SSW: 6463-20495 IU/ml (Median 12532)
18. SSW: 5337-14866 IU/ml (Median 10075)
19. SSW: 5199-16404 IU/ml (Median 8381)
20. SSW: 3365-13229 IU/ml (Median 6877)
21. SSW: 4167-9467 IU/ml (Median 5619)
22. SSW: 2711-11507 IU/ml (Median 4606)
23. SSW: 1574-5957 IU/ml (Median 3340)
24. SSW: 2125-6447 IU/ml (Median 4091)
Hinweis: Die Referenzbereiche beziehen sich auf Einlingsschwangerschaften. Der Hersteller gibt keine eigenen Bereiche für Mehrlingsschwangerschaften an.
AFP Multiple of Median (MoM) im Fruchtwasser
<2,5
Je nach Literaturquelle ist bei einem AFP-MoM im Fruchtwasser ≥2,5 bzw. ≥3,0 das Risiko für Neuralrohrdefekte und fetale Fehlbildungen erhöht.
Hinweis: Der angegebene Cut-Off bezieht sich auf Einlingsschwangerschaften. Ein valider Cut-Off für Mehrlingsschwangerschaften liegt uns nicht vor.
Indikation
Risikoabschätzung Mehrlingsschwangerschaft, Neuralrohrdefekt, Bauchwanddefekt, Anencephalie, Atresien des Magen-Darm-Traktes, kongenitale Nephrose, drohende Abort u.a.
Fruchtwasser-Untersuchung nach Amniozentese bei auffälligem AFP im Serum
Alpha-1-Fetoprotein (AFP) im Serum (Schwangerschaft)
Material
Serum: 1 ml
Stabilität: 5 Tage bei 2-8°C
Methode
CLIA
Referenzbereich
Vollendete Schwangerschaftswochen (SSW, 2,5-97,5 Perzentile):
14. SSW: 11,0-30,0 IU/ml (Median 22,5)
15. SSW: 11,5-45,8 IU/ml (Median 23,1)
16. SSW: 13,6-42,6 IU/ml (Median 24,9)
17. SSW: 17,5-44,4 IU/ml (Median 28,9)
18. SSW: 17,7-60,1 IU/ml (Median 33,9)
19. SSW: 18,0-70,2 IU/ml (Median 35,9)
20. SSW: 21,3-106,5 IU/ml (Median 42,3)
21. SSW: 31,8-128,4 IU/ml (Median 53,3)
22. SSW: 35,3-92,1 IU/ml (Median 64,5)
23. SSW: 47,7-113,3 IU/ml (Median 60,5)
AFP Multiple of Median (MoM, berechnet)
0,5-2,5
Bei einem AFP-MoM ≥2,5 innerhalb der 16. bis 20. SSW ist das Risiko für Neuralrohrdefekte, Spätabort, Frühgeburt und fetale Fehlbildungen sowie bei einem AFP-MoM <0,5 vor allem für Trisomien erhöht.
Akkreditiert
ja
Blutgruppenserologische Untersuchungen
Antikörper-Differenzierungen
Material
Vollblut: 10 ml
EDTA-Blut: 5-10 ml
Akkreditiert
ja
Antikörper-Suchtest
Material
Vollblut/EDTA-Blut: 5-10 ml
Methode
Agglutination
Anmerkung
Bei positivem Antikörper-Suchtest wird die Antikörper-Differenzierung durchgeführt.
Wiederholung Antikörper-Suchtest in 24.-27. SSW (qualitativ und ggf. quantitativ).
Siehe Hämatologie A-Z: Coombs-Test direkt und indirekt, Kälte-Auto-AK, Wärme-Auto-AK.
Akkreditiert
ja
Blutgruppe (ABO, Rh und Untergruppen)
Material
Vollblut/EDTA-Blut: 5-10 ml
Anmerkung
Details siehe Blutgruppen-Nachweis, Immunhämatologie.
Akkreditiert
ja
Chromosomendiagnostik
Material
Chorionzotten (Vor Versand bitte von großen Koagula befreien und in steriles Transportmedium überführen.)
Fruchtwasser: 5-10 ml
Nabelschnurblut: 2-3 ml heparinisiert
Methode
Klassische Chromosomenanalyse und
FISH-Direktnachweis
Anmerkung
Erläuterungen siehe Humangenetik /Pränataldiagnostik sowie Befundbericht.
DNA-Array
Material
EDTA-Blut: 1-2 ml
Fruchtwasser, Chorionzotten
Methode
CytoScan HD Array (Applied Biosystems, Thermo Fisher); Auflösung 50 kb oder besser
Kostenhinweis
Für ambulante GKV-Patienten kann die Analyse erst nach konventioneller zytogenetischer Chromosomenanalyse erfolgen. Sofern diese noch nicht durchgeführt wurde, bitte mit anfordern. Im Anschluss an die konventionelle Chromosomenanalyse ist die OGM-Analyse anstelle einer DNA-Array-Analyse zu erwägen.
Siehe auch Zytogenetik/Chromosomenanalyse Postnataldiagnostik /Pränataldiagnostik.
Indikation
- Pränataldiagnostik bei auffälligem Ultraschallbefund und/oder unklarer Strukturveränderung in der konventionellen Chromosomenanalyse
- Postnataldiagnostik bei V.a. Chromosomenaberration wie z.B. bei mentaler Retardierung oder syndromalem Phänotyp
Kontakt Analysebereich
E-Mail: abeckmann@labmed.de
FMH-Test (Fetomaternale Transfusion)
Material
EDTA-Blut: 1 ml
Methode
Durchflusszytometrie
Referenzbereich
HbF+CA- (Kindliche HbF-Zellen)
keine FMH: < 0,02%
fetale Mikrotransfusion: ≥ 0,02-0,6%
fetale Makrotransfusion: ≥ 0,6%
(Bewertung siehe Befundbericht)
Quellen:
Thomas, L.: Labor und Diagnose 2020. https://www.labor-und-diagnose-2020.de/index.html; abgerufen am 27.01.2022
Kiefel, V. (2010). Transfusionsmedizin und Immunhämatologie (4. Auflage). Springer-Verlag.
Sebring, E. S., Polesky, H. F.: Fetomaternal hemorrhage: incidence, risk factors, time of occurence, and clinical effects. Transfusion 1990; 30; 344-357.
Indikation
- Nachweis und quantitative Verlaufskontrolle einer FMH
- Kontrolle von blutigem Fruchtwasser nach Amniozentese
- Bestätigung von Nabelschnurpunktionen
Akkreditiert
ja
Gestationsdiabetes oGTT
Bezugsparameter
Glukose in NaF-Citrat-Blut
Materialentnahme
Bedingungen und Kontraindikationen für oGTT siehe Haupteintrag.
Durchführung:
- zum Zeitpunkt 0 Min.: Trinken von 75 g Glukose (oder äquivalenter Menge hydrolysierter Stärke) in 250-300 ml Wasser innerhalb von 5 Min.
- Blutentnahme zu den Zeitpunkten 0, 60 Min. und 120 Min. (3 Messungen)
- sachgerechte Probenaufbewahrung und -verarbeitung
Referenzbereich
Gestationsdiabetes liegt vor, wenn für mindestens zwei Werte gilt:
Material | Nüchternglukose | oGTT 1h-Wert | oGTT 2h-Wert |
---|---|---|---|
NaF-Citrat-Blut | ≥ 92 mg/dl ≥ 5,1 mmol/l | ≥ 180 mg/dl ≥ 10,0 mmol/l | ≥ 153 mg/dl ≥ 8,5 mmol/l |
Indikation
Screening üblicherweise in der 20.-24. SSW, Glukosemessung 1h nach 50 g Glukose oral bei der nicht nüchternen Patientin. Ausschluss bei Werten < 135 mg/dl, sonst weitere Abklärung durch oGTT.
Hämoglobin, fetales (HbF)
Material
EDTA-Blut: 2 ml
Methode
Kapillar-Elektrophorese
Anmerkung
siehe Hämoglobin-Elektrophorese oder FMH-Test
Akkreditiert
ja
Infektiologische Untersuchungen
Material
Serum: 1 ml je Untersuchung, insgesamt jedoch max. Serum: 5 ml
Methode
obligatorisch:
Röteln-IgG-AK (bei Patientinnen ohne dokumentierte Impfung; bei Patientinnen ohne Immunität Wiederholung 16.-17. SSW)
Lues (TPHA/LSR)
HIV-AK (nur auf Wunsch der Schwangeren)
Hepatitis Bs-Antigen (i.d.R. nach der 32. SSW)
fakultativ:
Cytomegalie-AK (IGeL)
Toxoplasmose-AK (IGeL)
Parvovirus B19-AK (IGeL)
Varizellen-AK (IGeL)
Weitere Antikörper bei Infektionsverdacht bzw. zur Beurteilung der Immunität.
Chlamydien-Antigen-Nachweis (Material: Erststrahlurin als Kassenleistung entsprechend EBM)
Anmerkung
Untersuchungen vor geplanter Schwangerschaft oder unmittelbar zu Beginn einer Schwangerschaft.
Bei fehlender Immunität sollte i.R. im weiteren Verlauf der Schwangerschaft eine erneute Untersuchung erfolgen.
Detaillierte Informationen zu den einzelnen Parametern finden Sie im Laborbereich Infektionsdiagnostik.
Optical Genome Mapping (OGM)
Material
EDTA-Blut: 6-8 ml
Fruchtwasser, Chorionzotten
Methode
Optical Genome Mapping, Bionano Genomics, Auflösung 50 kb oder besser
Kostenhinweis
Für ambulante GKV-Patienten kann die Analyse erst nach konventioneller Chromosomenanalyse erfolgen. Sofern diese noch nicht durchgeführt wurde, bitte mit anfordern. Im Anschluss an die konventionelle Chromosomenanalyse ist die OGM-Analyse anstelle einer DNA-Array-Analyse zu erwägen.
Siehe auch Zytogenetik/Chromosomenanalyse Postnataldiagnostik /Pränataldiagnostik sowie DNA-Array-Analyse.
Indikation
- Pränataldiagnostik bei auffälligem Ultraschallbefund und/oder unklarer Strukturveränderung in der konventionellen Chromosomenanalyse
- Postnataldiagnostik bei V.a. Chromosomenaberration wie z.B. bei mentaler Retardierung oder syndromalem Phänotyp
Anmerkung
Neue hochauflösende Chromosomenanalyse 2.0 auf molekulargenetischer Basis, die nicht nur wie die DNA-Array Analyse Zugewinne (≥ 50 kb) und Verluste (≥ 50 kb), sondern nebenbefundlich auch balancierte Translokationen, Inversionen sowie die Lokalisation und Orientierung von Duplikationen in sehr viel höherer Auflösung als eine konventionelle Chromosomenanalyse detektieren kann. Folgend der konventionellen Chromosomenanalyse ist eine OGM-Analyse anstelle einer DNA-Array-Analyse zu erwägen.
Detaillierte Informationen zur Methode, Anforderung, Abrechnung etc. entnehmen Sie bitte dem LabmedLetter 145 zum Thema OGM.
Akkreditiert
ja
Kontakt Analysebereich
E-Mail: abeckmann@labmed.de
RhD-Status, fetal, nicht-invasive Bestimmung aus mütterlichem Blut
Material
EDTA-Blut: 2 x 9 ml
- SSW und Zeitpunkt der Probennahme angeben.
- Frühestens ab der 12. SSW möglich. Eine Probennahme wird aber ab der 19. SSW empfohlen, um die zuverlässigsten Ergebnisse zu erzielen.
- Nach Blutentnahme schnellstmöglich zum Labor. Keine Einsendung zum Wochenende oder vor Feiertagen!
- Die eingesandten Proben können ausschließlich für die NIPT-RhD-Untersuchung verwendet werden. Wenn Sie darüber hinaus noch andere Analysen anfordern möchten, bitten wir um die Einsendung weiterer, separater Röhrchen.
Methode
Quantitative PCR (qPCR) der Exons 5, 7 und 10
(Genetische Analyse, Gensymbol: RHD)
EBM: 1x je Schwangerschaft bzw. höchstens 2x im Krankheitsfall
GOÄ- Ziffern: 1x 3920 + 1x 3922 + 3x 3924 (Faktor 1,15) + 1x 80 (Faktor 1,8), gesamt: 185,66 € zzgl. Versand
Indikation
Mutterschaftsvorsorge: RhD-negative Schwangere, die ein ebenfalls RhD-negatives Kind erwarten, könnten auf eine Anti-D-Prophylaxe verzichten.
Achtung: Gemäß Mutterschaftsrichtlinien NICHT bei Mehrlingsschwangerschaften durchführbar.
Anmerkung
Weitere Informationen siehe Labmed-Letter Nr. 137.
Nutzen Sie bitte unseren speziellen Anforderungsschein Pränataldiagnostik für Ihren Auftrag.
Ärztlicher Kontakt
E-Mail: wieczorek@labmed.de
Kontakt Analysebereich
E-Mail: lor@labmed.de
Toxoplasmose (Toxoplasma gondii)
Material
Serum: 1 ml
Methode
EIA/CLIA
Weitere Informationen siehe Laborbereich Infektionsdiagnostik.
Anmerkung
Bei fehlender Immunität der Schwangeren erneuerte Untersuchung ca. 20-24. SSW.
EBM: keine Kassenleistung